Mouse Teratoma Cells
P19 小鼠畸胎瘤细胞

细胞介绍

加拿大渥太华大学的Mc Burney 等在1982 年从雄性小鼠畸胎瘤中分离得到的 , 是一种能够在体外培养的多能干细胞, P19 细胞团经RA 诱导可分化成神经元、胶质细胞和纤维母细胞; 而经二甲基亚砜(DM SO ) 诱导则分化成心肌、骨骼肌和平滑肌细胞;在P19细胞向神经元分化的过程中，神经发育相关基因的表达模式基本模拟了正常小鼠神经发育过程, 因此, P19 目前被用作一个研究神经发育的体外模型。

P19 细胞作为研究神经分化机制的模型, 显著区别于其他细胞系的四大特点是:

①它具有正常小鼠的二倍体核型, 细胞分裂快, 可在体外迅速大量扩增, 多次传代也不丧失其分化能力。

②P19 细胞具有多种分化潜力, 不同诱导条件下可定向分化成不同类型的细胞, 种植到孕鼠囊胚中能分化成多种类型细胞。

③根据P19 细胞诱导分化分阶段进行的特点, 能将神经分化的早期机制与参与突起延伸的机制分开研究。

④该细胞易于转染, 且转染后仍能正常分化, 适于进行细胞基因研究。通过转染正常或突变的目的基因, 增强或抑制它们的表达水平可用于研究这些基因在神经分化中的作用。另外, 利用反义RNA 阻断内源蛋白的表达, 可用来观察这些蛋白在神经分化中的作用。

细胞特性

1） 来源：胚胎；畸胎癌

2） 形态：上皮细胞样 贴壁生长

3） 含量：>1x10^6  细胞数

4） 规格：T25瓶或者1mL冻存管包装

5)  用途：仅供科研使用。

运输和保存

干冰运输及复苏好存活细胞

（1）1mL冻存管包装干冰运输，收到后-80度冰箱保存过夜后转入液氮或直接复苏，若发现干冰已挥发干净、冻存管瓶盖脱落、破损及细胞有污染，请立即与我们联系。

（2）T25瓶复苏的存活细胞常温发货，收到后按照细胞接收后的处理方法操作。

细胞接收后的处理

1）收到细胞后，75%酒精消毒瓶壁将T25瓶置于37℃培养箱放置约2-3h，若发现培养瓶破损、有液溢出及细胞有污染，请拍照后及时联系我们。

2）请在4或5X显微镜下确认细胞状态，同时给刚收到的细胞拍照（10×，20×）各2-3张以及培养瓶外观照片一张留存，作为售后时收到时细胞状态的依据。

3）贴壁细胞：细胞在37℃培养箱中放置2-3h，显微镜下观察细胞的生长和贴壁情况，有些贴壁细胞在快递运送过程中会因振动脱落和脱落后成团的情况。若镜下观察细胞的生长密度若在60%以下，可去除培养瓶中灌液培养基（若有未贴壁的细胞需要离心回收，重悬打入到原培养瓶中）,加入新配制的完全培养基6-8mL，放到细胞培养箱中继续培养。若细胞生长密度达70%-80%以上，可以对细胞进行传代处理。传代过程中，若因运输振动脱落的细胞需要离心回收。

4）备注：运输用的培养基（灌液培养基）不能再用来培养细胞，请换用按照说明书细胞培养条件新配制的完全培养基来培养细胞。  收到细胞后第一次传代建议T25培养瓶1：2传代 。

一．培养基及培养冻存条件准备：

1）准备MEMα基础培养基 (推荐：iCell-0003)，小牛血清 7.5 % ，优质胎牛血清2.5 %，P/S 1 %

2）培养条件： 气相：空气，95%；二氧化碳，5%。 温度：37摄氏度，培养箱湿度为70%-80%。

3）冻存液：90%血清，10%DMSO，现用现配。

二．细胞处理：

1） 冻存细胞的复苏：

将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻，加入到含4-6mL完全培养基的离心管中混合均匀。在1000RPM条件下离心3-5min，弃去上清液，完全培养基重悬细胞。然后将细胞悬液加入含6-8ml完全培养基的培养瓶（或皿）中37℃培养过夜。第二天显微镜下观察细胞生长情况和细胞密度。

2） 细胞传代：如果细胞密度达80%-90%，即可进行传代培养。

对于贴壁细胞传代可以参考以下方法：

1. 弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。

2. 加入0.25％（w / v）胰蛋白酶-0.53 mM EDTA于培养瓶中（T25瓶1-2mL，T75瓶2-3mL），置于37℃培养箱中消化1-2分钟（难消化的细胞可以适当延长消化时间），然后在显微镜下观察细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，迅速拿回操作台，轻敲几下培养瓶后加入3-4ml含10%FBS的培养基来终止消化。 

3.轻轻打匀后吸出，在1000RPM条件下离心3-5min，弃去上清液，补加1-2mL培养液后吹匀。将细胞悬液按1：2的比例分到新T25瓶中，添加6-8ml按照说明书要求配置的新的完全培养基以保持细胞的生长活力，后续传代根据实际情况按1:2~1:5的比例进行。

3）细胞冻存: 收到细胞后建议在培养前3代时冻存一批细胞种子以备后续实验使用。

下面T25瓶为例；

1. 细胞冻存时按照细胞传代的过程收集消化好的细胞到离心管中，可使用血球计数板计数，来决定细胞的冻存密度。一般细胞的推荐冻存密度为1×10^6~1×107个活细胞/ml.

2. 1000rpm离心3-5min，去掉上清。用配制好的细胞冻存液重悬细胞 ，按每1ml冻存液含1×10^6~1×107个活细胞/ml分配到一个冻存管中将细胞分配到冻存管中，标注好名称、代数、日期等信息。

3. 将要冻存的细胞置于程序降温盒中，-80度冰箱中过夜，之后转入液氮容器中储存。同时记录好冻存管在液氮容器中的位置以便后续查阅和使用。

References:

【1】.张金平等. 全反式维甲酸体外诱导P19细胞向心肌方向分化.[J]中国组织化学与细胞化学杂志.2012.1，

【2】.梅宇钦等. 建立经优化的促P19鼠胚胎癌细胞神经分化模型.浙江大学学报（医学版）2012.04)